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#文献分享# 适配体能识别啥?除了蛋白 细胞 小分子,还有稀土元素、微塑料、纳米材料等

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推荐语

推荐这篇文献的目的:希望启发大家思考一下适配体的未来潜力。适配体不仅可以识别蛋白质、小分子、细胞等,还可以识别金属元素(包括稀土元素、放射性同位素等)、还有血液、组织,甚至塑料管、纳米材料,真可谓无奇不有。这也是适配体的优点之一,靶标超级广泛。未来适配体的杀手级应用会不会出现在某种特殊物质的识别上?

最近推荐来自加拿大学者的文献比例很高,前面刚推荐过李应福老师的双价筛选方法(见20241225日推文),以及刘珏文老师的微塑料(20241204)等,以及昨天(20250108)Krylov S. N.教授的文章。今天这篇文章同样来自刘珏文教授课题组。

本文利用Capture-SELEX技术筛选出稀土元素的DNA 适配体,对 Sc³⁺的特异性检测表现卓越。能有效区分稀土与其他金属离子,同时还能精准辨别轻、重稀土元素,相应的检测方法有望在环境监测、资源提取等领域发挥重要作用。


今天介绍一篇最新发表在JACS上的文章Kinetic and Affinity Profiling Rare Earth Metals Using a DNA Aptamer。文章介绍了一种能特异性结合稀土离子的 DNA 适配体 Sc-1,可区分稀土元素(REEs)与其他金属离子、轻稀土与重稀土,实现了对 Sc³⁺的特异性检测。

图1. Sc-1与稀土离子结合,区分稀土与其他金属离子,同时精准辨别轻、重稀土元素

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 研究背景 

稀土元素(REEs):包括钪(Sc)、钇(Y)和 15 种镧系元素,化学性质相似,多为三价氧化态,在高科技行业应用广泛。但 REEs 污染引发了环境和健康问题,其检测对环境监测和提取至关重要。

分析方法:ICP - AES (电感耦合等离子体-原子发射光谱)和 ICP - MS(电感耦合等离子体-质谱法)常用于REEs 分析,但成本高、周转慢,开发低成本生物传感器用于现场检测成为研究方向。此前有研究关注 DNA 酶对金属离子的检测,但 DNA 酶依赖不可逆化学反应,适配体在分离和长期监测镧系元素方面更具优势。

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研究目的

 开发一种能特异性结合稀土离子的 DNA 适配体,区分稀土元素(REEs)与其他金属离子、轻稀土与重稀土,实现对 Sc³⁺的特异性检测。

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研究内容 

1.Sc³⁺的 DNA 适配体筛选

图2.Sc³⁺筛选实验序列比对及 Sc-1、Sc-2适配体的二级结构信息。

    将含 30 个随机核苷酸的 DNA 文库与生物素化捕获链杂交,固定于链霉亲和素琼脂糖珠上,与 Sc³⁺孵育,结合的适配体经 PCR 扩增进入下一轮筛选,最后一轮 PCR 产物测序。经 SELEX 筛选得到 Sc-1 和 Sc-2 等适配体,Sc-1 在最终文库中占比 7.8%,其保守核苷酸分布于内环,中间可变区形成发夹结构。

2.ThT 荧光光谱区分 REEs 与非 REEs

图3.Sc⁺³ 与 Sc - 1 及突变体的荧光光谱、滴定曲线和 ThT 法选择性。

结合 Sc³⁺特异性:ThT 荧光测定显示 Sc-1 与 Sc³⁺结合使荧光降低约 80%,Kd为 192nM,Sc-2 也有类似荧光降低但Kd更高(896nM)。Sc-1a 突变体对 Sc³⁺无荧光响应,表明 Sc-1 与 Sc³⁺结合具有特异性,且结合与内环区域有关,Sc-1b 截断突变体与 Sc-1 荧光变化和相似。

选择性:除放射性钷(Pm)外的 REE 离子(2μM)均可使 Sc-1 荧光降低,与 Sc³⁺相似,表明 Sc-1 能结合所有 REE 离子;非 REE 金属离子(10μM)中除Cu2+外均未明显降低荧光,Cu2+引起的荧光降低归因于其强荧光猝灭特性,因此该方法可区分三价 REE 离子与其他金属离子。

环境因素影响:pH 值影响 Sc-1 与 Sc³⁺结合,pH 6 和 7 时结合最强,pH 5 或 8 时结合亲和力降低;温度方面,4°C 和 20°C 时荧光变化最高且Kd值相似,30°C 或更高温度时几乎无结合,高温下 Sc³⁺水解及熵的不利贡献可能导致结合降低。

3.动力学区分 Sc³⁺与轻重镧系离子

图4.Sc - 1 与 Sc³⁺、Tb³⁺结合动力学及 EDTA 作用下 REEs 的分组情况。

结合动力学差异:ThT 荧光动力学研究表明,Sc³⁺与 Sc-1 结合荧光降低缓慢(约 3min 达稳定),Tb3+结合则快得多;加入 EDTA 后,Tb3+样品荧光快速恢复,Sc³⁺样品荧光几乎不变,表明 Sc³⁺与适配体结合后难以被 EDTA 解离。

区分 REEs:基于 EDTA 加入后的荧光恢复情况,Sc-1 适配体可将 REEs 分为三组:第 1 组(La3+, Ce3+, Pr3+, Nd3+, Sm3+, Eu3+, and Gd3+)立即恢复;第 2 组(Tb3+, Dy3+, Ho3+, Er3+, Tm3+, Yb3+, Lu3+and Y3+)恢复缓慢;第 3 组( Sc³⁺)几乎无恢复。

4.链置换测定区分单个镧系元素

图5.检测 Sc³⁺的适配体传感器的示意图、动力学轨迹、校准曲线及对多种离子的选择性。

检测 Sc³⁺原理与性能:基于 Sc-1 适配体的链置换测定,其 5' 端延伸并标记 FAM 荧光团,与淬灭剂标记互补链杂交,Sc³⁺存在时适配体结合导致荧光增加。该系统可作为 Sc³⁺的生物传感器,检测限为 90pM,计算得到 Sc-1 与 Sc³⁺的真实Kd为 1.0nM。

区分不同 REEs:对不同金属离子响应测试表明,该适配体可结合所有 REEs 且能根据离子大小区分不同 REEs,结合亲和力在Gd3+后有明显跃升(Gd 断裂效应),与镧系离子大小、配位数及与适配体结合强度变化有关。计算得到Y3+, La3+, Nd3+,Tb3+、Lu3+的表观Kd和真实值Kd,显示镧系原子序数依赖的亲和力趋势,相邻镧系元素Kd差异约 2 倍,表明 DNA 可区分相邻三价镧系离子。非 REE 金属离子(包括Cu2+)未引起荧光增加,与 ThT 测定结果一致。

5.NMR 光谱解析 Sc³⁺结合

图6. Sc-1b 适配体与 Sc³⁺滴定过程中次黄嘌呤质子共振的 NMR 光谱。

NMR 光谱显示 Sc³⁺与 Sc-1b 适配体结合后形成新结构,含Watson-Crick和非Watson-Crick碱基对,结合比为 1:1。

6. 湖水样品中 Sc³⁺检测

图 7. (A) 用于检测湖水中的荧光结构转换信号适配体生物传感器。(B) 在湖水中存在不同浓度时,20 nM 传感器的动力学轨迹。插图:低  浓度下的线性响应。

基于 Sc-1 适配体的链置换传感器可稳定、高灵敏检测湖水样品中 Sc³⁺,检测限为 0.44nM,表明该传感器在 REEs 检测中潜力巨大。

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研究结论

本研究通过捕获 SELEX 法以为靶标获得并表征了 Sc-1 和 Sc-2 两种适配体,详细研究了 Sc-1。Sc-1 适配体仅对 REE 离子和有响应,对响应源于非特异性荧光猝灭。与适配体结合缓慢,加入 EDTA 后荧光几乎不增加。基于加入 EDTA 后的荧光恢复,结合适配体结合亲和力和动力学信息,可区分 REEs 与其他金属、不同类型镧系元素,实现特异性检测。

究展示了 DNA 区分相邻三价镧系离子的可能极限,该适配体可作为生物无机化学、分析生物传感器和环境化学的有用配体。




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2025-01-14 15:11
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